豬病常用的血清學(xué)診斷方法有哪些?
抗原和相應(yīng)的抗體在動物體內(nèi)或體外都能發(fā)生特異性結(jié)合反應(yīng),這種反應(yīng)稱為抗原抗體反應(yīng),習(xí)慣上把體內(nèi)的抗原抗體反應(yīng)稱為免疫反應(yīng),體外的抗原抗體反應(yīng)稱為血清學(xué)反應(yīng),因為抗體主要存在于血清中。血清學(xué)反應(yīng)可以用已知的抗體檢查未知的抗原,也可用已知抗原測定未知的抗體。人們根據(jù)抗體能與相應(yīng)抗原發(fā)生反應(yīng)并出現(xiàn)可見的抗原—抗體復(fù)合物的原理,設(shè)計了許多血清學(xué)診斷方法,不僅可以檢測動物體內(nèi)乃至體外的病原微生物,或其抗原性成分,而且還可以測定動物機(jī)體對病原微生物的侵襲或?qū)ζ淇乖煞值拿庖叻磻?yīng)。在抗原—抗體復(fù)合物成不可見狀態(tài)時,可以通過瓊脂擴(kuò)散、凝集實驗以及酶標(biāo)記等指示系統(tǒng),使其變?yōu)榭梢娀蚩蓽y狀態(tài)。目前已知的血清學(xué)診斷方法很多,現(xiàn)僅介紹幾種在目前條件下規(guī)模化豬場通過學(xué)習(xí)都能做到的診斷方法:(1)凝集試驗豬病診斷過程中常用的操作方法有以下幾種:①全血平板凝集試驗實踐中主要用于細(xì)菌性疾病的抗體檢測和抗原(經(jīng)分離培養(yǎng)后)的鑒定?,F(xiàn)舉例用已知豬丹毒抗原(丹毒桿菌的純培養(yǎng)液)測定被檢豬血清中的抗體。其操作步驟如下:a.材料豬丹毒凝集抗原,玻片,9號針頭,酒精棉球,酒精燈,鉑耳(取血環(huán))等。b.操作用鉑耳取已知抗原1滴,置于玻片上。用酒精棉球擦拭針頭,鉑耳在酒精燈上灼燒消毒。用針頭刺破被檢豬的耳靜脈,以鉑耳取血與玻片上的抗原等量混合,在2~3分鐘內(nèi)觀察結(jié)果。c.結(jié)果判定出現(xiàn)顆粒狀的凝集,為陽性反應(yīng)。否則為陰性。②試管凝集試驗是一種定量法,用于測定被檢血清或其他體液中有否某種抗體及其效價,可做臨床的輔助診斷,或用于流行病學(xué)監(jiān)測。在豬場中,本法常用于豬布氏桿菌病的診斷。A.材料布氏桿菌病試管凝集抗原(1∶20倍稀釋),布氏桿菌病陽性血清、陰性血清(1∶25倍稀釋),稀釋液(0.5 %石炭酸生理鹽水),滅菌小試管,1毫升吸管,試管架,待檢血清等。B.操作取試管7支置于試管架上,設(shè)陽性和陰性血清及抗原對照各1支,測定管4支,以后每增加1個樣品,只需增加4支測定管。按表10示意稀釋血清,加抗原,完成后每支試管內(nèi)應(yīng)含1毫升液體。表10 布氏桿菌試管凝集反應(yīng)(單位:毫升)試管號 1 2 3 4 5 6 7血清稀釋倍數(shù) 1∶25 1∶50 1∶100 1∶200 陽性血清對照1∶25 陰性血清對照1∶25 抗原對照0.5%石炭酸生理鹽水 1.5 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5待檢血清 0.5 0.5 0.5 0.5 抗原(1∶20稀釋) 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5棄0.5 棄0.5加入抗原后,將試管充分振蕩,置于37℃溫箱反應(yīng)24小時后,判定結(jié)果。C.判定標(biāo)準(zhǔn)“-” 液體均勻混濁,管底無凝集物,不凝集?!?” 液體透明度較差,管底有少量凝集物,為25%凝集。“++” 液體中等渾濁,管底有中等量的傘狀沉淀,50%菌體凝集?!?++” 液體幾乎透明,管底有明顯傘狀沉淀,75%菌體凝集?!?+++” 液體完全透明,管底出現(xiàn)大片的傘狀沉淀,100%菌體凝集。結(jié)果判定:已出現(xiàn)50%菌體凝集的血清最高稀釋度為該血清的凝集價。在檢測豬布氏桿菌病時,血清凝集價在1∶50以上時,可判為陽性反應(yīng)。若凝集價為1∶25,則為可凝集(需重復(fù)試驗1次)。如豬群中基本無陽性反應(yīng)。則凝集價1∶25也可判為陰性。③間接紅細(xì)胞凝集實驗(簡稱間接血凝試驗)該試驗?zāi)艽蟠筇岣叻磻?yīng)的敏感性。用抗體致敏紅細(xì)胞檢測相應(yīng)的抗原,稱為反向間接血凝試驗;反之,稱為正向間接血凝實驗。在豬病的診斷中,常采用本法對豬口蹄疫、水泡病、豬瘟、傳染性胸膜肺炎等疾病抗原的鑒定,或抗體的檢測?,F(xiàn)舉例豬口蹄疫的抗體檢測(正向間接血凝),操作步驟如下:A.目的檢測被檢血清樣品中豬口蹄疫抗體的效價。B.材料豬口蹄疫(O型)正向間接血凝標(biāo)準(zhǔn)致敏紅細(xì)胞(由蘭州獸醫(yī)研究所提供),標(biāo)準(zhǔn)陽性陰性血清,稀釋液,96孔“V”形有機(jī)玻璃微量血凝板,微量加樣器,滴頭,被檢血清等。C.操作將待檢血清置60℃水浴中滅活30分鐘,用微量加樣器對血凝板上的每孔加入25微升稀釋液,取25微升待檢血清加到第一孔,用加樣器以吸入與排出的動作混合3~4次,取出25微升放入第二孔混勻,依次到第九孔,取出25微升棄掉。血清稀釋度從第一到第九孔分別為1∶2,1∶4,1∶8,1∶16,1∶32,1∶64,1∶128,1∶256,1∶512(第一排的10~12孔設(shè)陽性血清對照、陰性血清對照和抗原對照)。每孔加入25微升致敏紅細(xì)胞,振蕩1~2分鐘,置37℃溫箱或室1~2小時或更長時間,然后判定結(jié)果。D.判定標(biāo)準(zhǔn)“-” 紅細(xì)胞沉底,呈圓點(diǎn)狀,不凝集?!?” 紅細(xì)胞大部分集中于中央,周圍只有少數(shù)凝集,即25%凝集。“++” 紅細(xì)胞呈薄層凝集,中心致密,邊緣分散,即50%凝集?!?++” 紅細(xì)胞凝集程度較上有所增加,即75%凝集。“++++” 紅細(xì)胞呈薄層凝集,布滿整個孔底或邊緣,蜷曲呈荷包蛋邊狀,即100%凝集。結(jié)果判定:以出現(xiàn)50%凝集(++)的血清最高稀釋度,為該血清的間接血凝價。④血凝(HA)與血凝抑制(HI)試驗在豬的傳染病中,細(xì)小病毒感染、乙型腦炎、偽狂犬病等,適宜進(jìn)行血凝和血抑試驗,本試驗以檢測豬細(xì)小病毒血清抗體為例,介紹如下:A.材料豬細(xì)小病毒濃縮診斷抗原,豚鼠沉積紅細(xì)胞配成的0.5%懸液。稀釋液、標(biāo)準(zhǔn)陽性和陰性血清、被檢血清、96孔V形有機(jī)玻璃微量血凝板、25~50微升微量移液管、微量振蕩器、普通離心機(jī)等。B.試驗方法a.血凝(HA)試驗用滴管在96孔血凝板上以第一孔至試驗所需要稀釋倍數(shù)孔,每孔滴加稀釋液25微升,用移液器從第一孔開始依次稀釋,置微量振蕩器上振蕩15秒,最后每孔滴加0.5%豚鼠紅細(xì)胞25微升,振蕩30分鐘,置室溫(20℃左右)1小時后判定。b.血凝抑制(HI)試驗被檢豬血清先經(jīng)56℃、30分鐘滅活,然后加入50%豚鼠紅細(xì)胞(最終濃度)和等量的高嶺土,搖勻后放室溫15分鐘,經(jīng)2000轉(zhuǎn)/分離心10分鐘,取上清液以除掉血清中非特異性的凝集素和抑制素,然后用稀釋液將每份處理過的血清1∶5~1∶10至240倍比稀釋,在向每孔加入等量4個血凝單位的標(biāo)準(zhǔn)血凝素(抗原),混勻后置室溫1小時,加入新配制的0.5%豚鼠紅細(xì)胞懸液,混勻后置室溫2小時,判定結(jié)果,同時設(shè)陽性、陰性血清及紅細(xì)胞和抗原的對照,HI抗體滴度≥1∶20者為陽性,豬感染PPV后7天左右可檢出HI抗體,12~14天可達(dá)1∶1024~5000。⑤乳膠凝集試驗(LAT)本法在豬病中主要作用于偽狂犬病和豬萎縮性鼻炎的診斷,是用其病毒或細(xì)菌致敏乳膠抗原來檢測被檢豬的血清、全血或乳汁中的抗體,具有簡便、快速、特異、敏感的優(yōu)點(diǎn)。A.材料偽狂犬病毒致敏乳膠抗原,偽狂犬病陽性血清、陰性血清、稀釋液,玻片,吸頭,被檢血清或全血或乳汁(通常采初乳,經(jīng)3000轉(zhuǎn)/分鐘離心,取上清液做待檢樣品)。B.試驗方法a.定性試驗取被測樣品(血清,全血或乳汁)、陽性血清、陰性血清、稀釋液各1滴,分置于玻片上,各加乳膠抗原1滴,用牙簽混勻,攪拌并搖動1~2分鐘,于3~5分鐘內(nèi)觀察結(jié)果。b.定量試驗先將血清在微量反應(yīng)板或小試管內(nèi)作連續(xù)倍比稀釋,各取1滴依次滴加于乳膠凝集反應(yīng)板上,另設(shè)對照(同上),隨后各加乳膠抗原1滴。如上攪拌并搖動,然后判定。C.結(jié)果判定首先對照組要出現(xiàn)如下結(jié)果,本試驗才能成立:陽性血清加抗原呈“++++”,陰性血清加抗原呈“-”,抗原加稀釋液呈“-”。“++++”全部乳膠凝集,顆粒聚集于液滴邊緣,液體完全透明。“+++”大部分乳膠凝集,但顆粒明顯,液體稍混濁?!?+”約50%乳膠凝集,但顆粒較細(xì),液體較混濁?!?”僅有少許凝集,液體混濁?!?”液滴呈原有的均勻乳狀。以出現(xiàn)“++”以上凝集者,判為陽性凝集。注意事項:試劑盒應(yīng)在2~8℃冷暗處保存,暫定1年。乳膠抗原為乳白色狀液體,如出現(xiàn)分層,使用前輕輕搖勻。(2)沉淀實驗具體方法有多種,如環(huán)狀沉淀實驗、瓊脂擴(kuò)散實驗和免疫電泳等。在豬病的診斷中,目前最常用的是瓊脂擴(kuò)散實驗,現(xiàn)以檢測偽狂犬病的抗體為例,將其操作方法介紹如下:A.材料偽狂犬病標(biāo)準(zhǔn)抗原,陽性血清,陰性血清,待檢血清(56℃滅能30分鐘),生理鹽水,打孔器,微量移液器,培養(yǎng)皿,瓊擴(kuò)瓊脂(配制方法:含有0.1%石炭酸的磷酸緩沖鹽水,加入1%的優(yōu)質(zhì)瓊脂,在沸水中融化均勻,若有雜質(zhì),須用紗布過濾,然后分裝于鹽水瓶內(nèi),保存?zhèn)溆茫?。B.操作a.澆瓊脂板和打孔將已融化的瓊脂趁熱倒入平皿,制成3毫米厚的瓊脂板,待凝固后進(jìn)行打孔。一組共7個孔,中間1孔,孔徑4毫米,孔距3毫米。用打孔器打孔,剔出孔內(nèi)的瓊脂然后將瓊脂板在酒精燈上來回過2~3次,使瓊脂與玻板之間的空隙封閉。b.向孔內(nèi)加樣中央孔加抗原,外周孔第1,5孔加陽性和陰性血清作對照,第2,3,4,6孔加待檢血清。將加完樣的瓊脂平皿加上蓋子,置37℃恒溫箱擴(kuò)散24~36個小時,然后判定結(jié)果。C.結(jié)果判定首先檢查標(biāo)準(zhǔn)陽性血清孔和抗原孔之間是否出現(xiàn)明顯的致密的白色沉淀線,而陰性孔則不出現(xiàn),只有在對照組出現(xiàn)正確結(jié)果的前提下,被檢孔才可參照標(biāo)準(zhǔn)判定。注意事項:第一,瓊擴(kuò)所用的瓊脂必須是優(yōu)質(zhì)的瓊脂粉,若用普通的瓊脂條,應(yīng)事先凈化精制。精制的簡易方法是:取條狀瓊脂24克,加蒸餾水1000毫升,在沸水中融化,趁熱倒入搪瓷盤中,待冷卻后切成1平方厘米大小的瓊脂塊,用蒸餾水或無離子水浸泡2~3天,每天換水4~5次,然后將處理好的瓊脂塊隔水融化,加入0.1%石炭酸磷酸緩沖鹽水,配成1%瓊脂。第二,制備瓊脂板應(yīng)在水平臺上進(jìn)行,防止薄厚不勻。板的厚度要求一致(7.5厘米的平皿,用15毫升瓊脂液)。澆制時防止產(chǎn)生氣泡。平皿澆制的瓊脂板在4℃冰箱內(nèi)可保存15天。第三,打孔的孔徑、孔距力求準(zhǔn)確、合適。第四,孔中滴加抗原和血清時,孔內(nèi)必須加滿而又不能外溢。加樣時不能帶進(jìn)小氣泡。(3)酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)它是根據(jù)抗原與抗體特異性結(jié)合的功能,以酶做標(biāo)記物,利用酶對底物具有高效催化作用的原理而設(shè)計的。它既可以用于抗原的診斷,也可進(jìn)行血清抗體的檢測,可達(dá)到定性和定量的目的。已廣泛地用于傳染性疾病的診斷,血清流行病學(xué)調(diào)查和抗體水平的評價等。目前在獸醫(yī)防治的研究和實踐中,對于豬瘟、偽狂犬病、繁殖障礙與呼吸綜合征、流行性腹瀉、旋毛蟲病、豬氣喘病等疾病,均采用免疫酶技術(shù)進(jìn)行病原診斷、抗體檢測和血清學(xué)流行性調(diào)查,并且已成為規(guī)模化豬場化驗室工作的一項重要內(nèi)容。利用免疫酶技術(shù)測定抗原和抗體的方法很多,下面簡要介紹3種適合豬場使用的免疫酶技術(shù)。①斑點(diǎn)酶聯(lián)免疫吸附實驗(Dot—ELISA)A.材料硝酸纖維濾膜(孔徑0.45微米),0.01摩/升、pH7.2的磷酸鹽緩沖鹽水,封閉液(磷酸鹽緩沖鹽水加入10%馬血清或0.1%明膠),30%雙氧水(H2O2),3,3′-二甲基聯(lián)苯胺(DAB)抗原液,陰性對照,待檢液,待檢血清,陽性血清及陰性血清,酶標(biāo)兔抗豬免疫球蛋白G(IgG),0.05摩/升三羥甲氨基甲烷—鹽酸緩沖液,洗滌液(磷酸鹽緩沖鹽水加入0.05%吐溫-20)。B.檢測抗原操作第一,硝酸纖維薄膜(NCM)的處理:在濾膜上劃6毫米×6毫米的方格,在方格中央用蘸水筆末端壓成圓形痕跡。置于蒸餾水中浸泡10分鐘,取出后晾干備用。第二,點(diǎn)樣:取1毫升待檢液在硝酸纖維濾膜圓圈內(nèi)點(diǎn)樣,同時設(shè)立陽性與陰性對照,自然干燥或置于37℃溫箱中干燥。第三,封閉:將硝酸纖維濾膜置于封閉液中,37℃、30分鐘,用洗滌液洗滌1次,約3分鐘。第四,加豬陽性血清,將硝酸纖維薄膜置于豬陽性血清中,37℃作用1小時,取出用洗滌液洗滌3次,每次3分鐘。第五,加酶標(biāo)兔抗豬免疫球蛋白G,37℃作用1小時,然后洗滌3~4次,每次3分鐘。第六,加底物溶液(0.05摩/升三羥甲氨基甲烷—鹽酸緩沖液100毫升,加3,3′-二甲基聯(lián)苯胺40毫克,30%雙氧水50微升),作用5~10分鐘。第七,終止顯色,將硝酸纖維濾膜置于蒸餾水中沖洗2~3分鐘。第八,自然干燥,或37℃下干燥。第九,判定標(biāo)準(zhǔn):“-” 不呈現(xiàn)斑點(diǎn),與陰性對照相同?!?” 斑點(diǎn)較弱或沉淀內(nèi)有不均質(zhì)的棕色點(diǎn)?!?+” 斑點(diǎn)淺棕色,對比度清晰?!?++” 介于++和+++兩者之間?!?+++”斑點(diǎn)深棕色,背景白色。出現(xiàn)陽性反應(yīng)的血清最高稀釋度為該血清的Dot—ELISA效價。第十,注意事項:試驗中的點(diǎn)樣抗原、血清及酶標(biāo)抗體的稀釋度,應(yīng)根據(jù)預(yù)備試驗確定;試驗中應(yīng)使用不溶性供氫體;如3,3′-二甲基聯(lián)苯胺,4-氯-1-萘酚等,不能使用可溶性供氫體;根據(jù)試驗的目的要求,確定檢測抗原或抗體;封閉液可使用異種動物血清、牛血清蛋白(BSA)或明膠溶液等進(jìn)行封閉,根據(jù)預(yù)備試驗選擇最佳封閉條件。C.檢測抗體操作第一,硝酸纖維濾膜的處理,同檢測抗原。第二,點(diǎn)樣,取已知抗原液點(diǎn)樣,自然晾干或37℃干燥。第三,封閉,同檢測抗原。第四,將點(diǎn)樣后的硝酸纖維濾膜按點(diǎn)樣格子剪成小塊,置入系列稀釋液的待檢血清(1∶10,1∶50,1∶100,1∶200,1∶400,1∶800,1∶1600,1∶3200,1∶6400,1∶12800)中,同時設(shè)立陽性和陰性血清對照,37℃作用1小時,然后用洗滌液洗滌3次,每次3分鐘。第五,以下均同檢測抗原第六、第七、第八、第九、第十項操作。②酶聯(lián)免疫吸附實驗(ELISA)現(xiàn)介紹豬病診斷常用的兩種方法:A.間接法將已知抗原吸附(或稱包被)與固相載體,孵育后洗去未吸附的抗原,隨后加入含有特異性抗體的被檢血清,感作后洗滌未起反應(yīng)的物質(zhì),加入酶標(biāo)抗同種球蛋白(如被檢血清是豬血清,則需用抗豬球蛋白),感作后再經(jīng)洗滌,加入酶底物,底物分解后出現(xiàn)顏色變化,顏色變化的速度及程度,與樣品中的抗體量有關(guān),即樣品中的抗體愈多,顏色出現(xiàn)愈快、愈深。a.材料0.05摩/升、pH9.6碳酸鹽緩沖液,稀釋液用0.01摩/升、pH7.2磷酸緩沖鹽水(含0.13摩/升氯化鈉,0.5%犢牛血清),洗滌液用0.01摩/升、pH7.2磷酸鹽緩沖鹽水(含0.13摩/升氯化鈉,0.05%吐溫-20),30%雙氧水,鄰苯二胺(OPD),pH5.0磷酸二氫鈉—檸檬酸緩沖液,2摩/升硫酸,抗原,陽性血清,陰性血清,待檢血清,酶標(biāo)兔抗豬免疫球蛋白,40孔聚苯乙烯聯(lián)板,酶聯(lián)免疫檢測儀。b.操作第一,用碳酸鹽緩沖液配置一定濃度的抗原包被液包被酶聯(lián)板,每孔100微升,置37℃條件下2小時,或在4℃冰箱內(nèi)過夜。第二,傾去孔內(nèi)液體,用洗滌液加滿各孔,洗滌3次,每次3分鐘,然后傾盡洗滌液。第三,除調(diào)零孔外,其余孔加入用稀釋液稀釋的待檢血清,每孔100微升,同時設(shè)立陽性、陰性血清對照,置37℃下反應(yīng)1.5小時。第四,抗體效價測定。將待檢血清進(jìn)行血清進(jìn)行倍比稀釋,每份血清加兩排孔,即同一稀釋度的血清加上下相鄰的兩個孔,每孔100微升,凋零孔不加血清。同時設(shè)立陽性、陰性血清對照。置37℃反應(yīng)1.5小時。第五,洗滌同第二。第六,除調(diào)零孔外,每孔加入酶標(biāo)記兔抗豬免疫球蛋白G 100微升,置37℃下反應(yīng)1.5小時。第七,洗滌同第二。第八,每孔加入新配置的底物溶液(取鄰苯二胺40毫克,溶于100毫升pH5.0的磷酸鹽—檸檬酸緩沖液,臨用前加入30%雙氧水0.15毫升)100微升,室溫下觀察顯色(5~30分鐘)。第九,每孔加入50微升,2摩爾/升硫酸終止反應(yīng)。第十,用酶聯(lián)免疫檢測儀測定每孔490納米波長的光密度(OD)值。B.夾心法本法是檢測抗原的方法,將特異性免疫球蛋白吸附于固相載體表面,然后加入含有抗原的溶液,使抗原和抗體在固相表面形成復(fù)合物,洗除多余的抗原,再加入酶標(biāo)記的特異性抗體,感作后沖洗,加入酶的底物,顏色的改變與被測樣品中的抗原量成正比。a.材料同間接法。b.操作(以檢測豬瘟病毒抗原為例)第一,抗體包被:將一定溶度的豬瘟高免血清(用碳酸鹽緩沖液進(jìn)行稀釋)包被酶聯(lián)板,每孔100微升,置37℃下反應(yīng)2小時,或4℃冰箱中過夜。第二,洗滌:同間接法。第三,加被檢樣品,除調(diào)零孔外,每份樣品加2個孔,每孔加100微升,同時設(shè)立陽性抗原、陰性抗原對照,酶結(jié)合物對照(抗體加磷酸鹽緩沖鹽水加酶結(jié)合物),置37℃下反應(yīng)1.5~2小時。第四,洗滌,同第二。第五,加底物溶液,同間接法第八。第六,同間接法第九。第七,同間接法第十。C.結(jié)果判定常用的判定方法有3種。陰陽性表示法:待檢樣本吸收值:規(guī)定吸收值≥0.2~0.4為陽性。規(guī)定吸收值等于陰性樣本平均吸收值加SD(標(biāo)準(zhǔn)差)。陽性陰性比(P/N)法:樣本吸收值/陰性樣本平均吸收值≥2~3者為陽性。終點(diǎn)表示法:以出現(xiàn)陽性反應(yīng)的樣本最高稀釋度,為該樣本的滴度。D.注意事項第一,包被過程中以高pH和低離子強(qiáng)度的條件為佳,包被濃度在1~100毫克/毫升選擇最佳濃度。第二,血清或抗原稀釋液應(yīng)含5%~10%異種動物血清,或1%牛血清白蛋白,或0.5%明膠,以起封閉作用,防止非特異性反應(yīng),否則應(yīng)在第二與第三步之間加封閉液進(jìn)行封閉。第三,洗滌要充分,酶結(jié)合物應(yīng)按照要求進(jìn)行稀釋和使用,底物溶液一定要現(xiàn)配現(xiàn)用。第四,顯色時陰性對照剛出現(xiàn)微黃色時,應(yīng)立即終止反應(yīng)。第五,用陽性陰性比方法判定結(jié)果時,陰性對照孔若小于0.1,則易出現(xiàn)誤判。第六,用自動酶聯(lián)儀檢測時,應(yīng)按儀器規(guī)定說明確定調(diào)零孔。第七,同一稀釋度2個孔的490納米波長光密度值的平均值,為該稀釋度的光密度值,對照孔應(yīng)作同樣處理。③豬瘟單克隆抗體純化酶聯(lián)免疫吸附試驗A.材料本試驗的試劑盒由中國獸藥監(jiān)察所提供。本抗原包括豬瘟弱毒單抗純化酶聯(lián)抗原和豬瘟強(qiáng)毒單抗純化酶聯(lián)抗原,分別供檢測經(jīng)豬瘟弱毒疫苗免疫后產(chǎn)生的抗體和感染豬瘟強(qiáng)毒后產(chǎn)生的抗體之用。同時提供酶標(biāo)抗體,陽性、陰性血清,酶聯(lián)板及其他器材和試劑。B.試驗方法第一,用包被液將豬瘟弱毒單抗純化酶聯(lián)抗原、豬瘟強(qiáng)毒單抗純化酶聯(lián)抗原各做100倍稀釋,以100微升分別加入做好標(biāo)記的酶聯(lián)板孔中,置濕盒于4℃過夜。第二,棄去孔內(nèi)液體,用洗滌液沖洗板3次,每次間隔3~5分鐘,拍干。第三,用稀釋液將待檢血清作400倍稀釋,每孔加入100微升,同時將豬瘟陽性陰性血清以100倍稀釋作對照,37℃下培育1.5~2小時。第四,重復(fù)第二步。第五,用稀釋液將兔抗豬免疫球蛋白G辣根過氧化物酶結(jié)合物作100倍稀釋,每孔加入100微升,37℃下培育1.5~2小時。第六,重復(fù)第二步。第七,每孔加入底物溶液(每塊板所需的底物溶液按鄰苯二胺5毫克加底物緩沖液5毫升加30%雙氧水18.75微升配制)100微升,室溫下觀察顯色反應(yīng)(一般陰性對照孔略微顯色,立即終止反應(yīng),并以陰性孔作空白調(diào)零)。第八,每孔加入終止液50微升,于酶聯(lián)讀書儀上測定490納米波長的光密度(OD)。C.判定標(biāo)準(zhǔn)a.在豬瘟弱毒酶聯(lián)板上光密度>0.2為豬瘟弱毒抗體陽性。光密度<0.2為豬瘟弱毒抗體陰性。b.在豬瘟強(qiáng)毒酶聯(lián)板上光密度≥0.5為豬瘟強(qiáng)毒抗體陽性。光密度<0.5為豬瘟強(qiáng)毒抗體陰性。D.注意事項第一,運(yùn)輸單純純化酶聯(lián)抗原時,必須使用冰盒低溫運(yùn)輸。第二,配制洗滌液時,應(yīng)使用新鮮蒸餾水或無離子水;每次洗板后,盡量不使孔中有殘余液體,以免影響結(jié)果。第三,底物溶液臨用前配置,待鄰苯二胺完全溶解于底物緩沖液后再加雙氧水,混勻后立即加入孔中。第四,終止反應(yīng)后,應(yīng)立即讀數(shù)。200.豬場獸醫(yī)檢驗室應(yīng)配備哪些器材和試劑?(1)設(shè)備類:豬場獸醫(yī)檢驗室配備的主要設(shè)備有電冰箱、電熱培養(yǎng)箱、電熱干燥箱、臺式離心機(jī)、超凈工作臺、高壓滅菌鍋、顯微鏡、蒸餾水器、微量血清振蕩器、組織搗碎機(jī)等。(2)器械類:豬場獸醫(yī)檢驗室配備的主要器械有普通天平、研缽、鐵三腳架、酒精燈、石棉網(wǎng)、試管架、接種棒、帶蓋搪瓷盤、鋁飯盒、微量反應(yīng)板(V型)、微量移液器(100微升、250微升)、普通剪刀、眼科剪刀、眼科鑷子、長鑷子、手術(shù)刀等。(3)豬場獸醫(yī)檢驗室配備的主要玻璃器材:有玻璃注射器、試管、刻度吸管、燒杯、三角燒瓶、玻璃漏斗、量筒、玻璃珠、載玻片、蓋玻片等。(4)試劑類:豬場獸醫(yī)檢驗室配備的主要試劑有95%乙醇、氯化鈉、氫氧化鈉、堿性復(fù)紅、結(jié)晶紫、沙黃、姬姆薩、甲醇、甲醛、草酸銨、甲基紅、營養(yǎng)瓊脂、麥康凱瓊脂、SS瓊脂、三糖鐵瓊脂、微量生化反應(yīng)管、二甲苯、顯微鏡油、擦鏡紙、常用豬病血清學(xué)診斷試劑盒等。附錄:豬的實用生理常數(shù)
本網(wǎng)站文章僅供交流學(xué)習(xí) ,不作為商用, 版權(quán)歸屬原作者,部分文章推送時未能及時與原作者取得聯(lián)系,若來源標(biāo)注錯誤或侵犯到您的權(quán)益煩請告知,我們將立即刪除.